临床采集标本知识培训

⑴ 标本采集的原则

标本采集一般指的是医疗中临床采集，原则有遵照医嘱、充分准备、严格查对、正确采集、及时送检，充分准备需要注意检验项目、检验目的、采集标本量等方面，护士要提前给患者解释和引导。

标本采集的原则

采集标本需要根据检验目的选择适当的容器，送检前要认真查对，容器外要贴上带有患者信息的标签，凡是会干扰检验的药物和食物，采集前都要停止使用。

标本采集的最佳时间是在早晨空腹、患者处于静息状态时进行，减少昼夜节律变化和饮食带来的影响，此外，还要选择最有诊断价值的时间进行。

采集时应选用最有代表性的标本，例如血、尿、粪、痰、呕吐物等，采集量根据检查目的进行相应的选择，检验标本采集后应在1小时内送检。

⑵ 临床标本的采集原则是什么

(一)按医嘱采集标本。
(二)作好采集前准备：
1.明确检验项目、检验目的，选择方法，确定量。
2.选择标本容器，贴标签。
3.仔细查对医嘱、检验申请单。
4.解释说明，取得配合。
(三)确保标本质量：
1.及时，准确。如作妊娠试验要留晨尿。
2.及时送检，特殊标本注明采集时间。
(四)培养标本的采集：
病人使用抗生素之前;
如已用药，在血药浓度最低时采集，并注明;
严格执行无菌操作;
无菌容器无裂缝，瓶塞干燥;
不可混入防腐剂、消毒剂或药物;
培养液应足量，无混浊、变质。

⑶ 浅谈如何正确采集血培养标本

血培养采血时间应在患者接受抗生素治疗之前，患者寒战时或发热初期采血。超过发热峰值后，病原菌逐渐被机体免疫系统清除，从而降低检出率。血培养采血部位宜采用外周静脉血，不建议采用动脉血或通过血管内导管采血。只有在怀疑导管相关性血流感染时，可以分别通过导管和外周静脉采取相同量的血标本，同时送细菌室进行培养。多次血培养阴性，仍发热不退或全身感染症状明显但不能明确感染来源时，可考虑采取骨髓标本。通常首先采用70%异丙醇或乙醇消毒穿刺部位皮肤，待干后，用碘液或碘伏（或2%氯己定异丙醇液）由内至外擦拭，待其完全干后，再用70%乙醇脱碘。严格执行此三步消毒后，可行静脉穿刺采血。对碘过敏的患者或儿童，采用70%异丙醇或乙醇消毒60秒，待穿刺部位乙醇挥发干燥后穿刺采血。采血量的多少对检出血流感染的病原菌非常重要。通常的采血量为培养基的1/10~1/5，也可根据厂家的建议确定采血量。对于成人患者或体重在40kg以上者，通常按每个部位采集15~20ml血液，2个部位共采集30~40ml血液，2个部位的最低总采血量不能少于20~30ml。对于新生儿及1岁以下体重低于4kg的儿童患者，一次抽血0.5~1.5ml，不必采两套血;对于1~6岁儿童，按每年龄增加1岁，增加1ml计算采血量，如3岁儿童，2个部位共采血3ml，每个部位各采血1.5ml；对于体重在15~40kg的儿童，共采血10~20ml，每个部位采集5~10ml。血培养瓶的选择：一次静脉穿刺采取的血液分别注入需氧瓶和厌氧瓶进行培养，即完整的“一套”血培养。同时进行需氧和厌氧培养可以提高阳性培养率，缩短阳性报警时间。采血注入厌氧瓶时，注意勿将注射器内的空气注入瓶内，否则会破坏瓶内的无氧状态。可采取先注入需氧瓶在注入厌氧瓶的方法。对于已接受抗生素治疗的患者，应使用含树脂或活性炭的培养瓶以提高检出率。对于儿童患者应采用儿童瓶。采血次数：对怀疑血流感染患者应至少从2个部位分2次采集血液标本进行培养，以提高阳性培养率；而且2次或2次以上血培养结果可以帮助排除污染的可能。采血间隔时间：①急性败血症或骨髓炎、脑膜炎、肺炎、肾盂肾炎需要立即进行抗菌治疗时，应在启动治疗前，自不同部位采取2套血液进行血培养；②对于不明原因发热，亚急性细菌性心内膜炎或菌血症、真菌血症，可于24小时内自不同部位采集2~4t套血培养标本，每次相隔至少3小时；③对怀疑急性感染性心内膜炎的患者，应在1~2小时内，自3个部位采集3套血培养；④儿童患者，应尽早采血进行血培养。需注意的是，如同时为患者使用多个真空采血管，血培养（黄色）管须首先使用。检测肝功须采集空腹静脉血（禁食8h~14h），可用红色管、绿色管、浅绿色管、金黄色管，不同的采血管按说明书要求使用。静脉血标本采集程序：1、收取检验申请单并审核申请单信息，审核合格后，与患者交流、辨别患者状态，确认患者是否按规定限制饮食，以及是否对乳胶敏感；2、准备材料，指导患者做好体位准备，扎好止血带，找好采血静脉部位，戴好手套；3、穿刺点消毒，静脉穿刺，嘱患者松拳，并使用装或未装特殊抗凝剂真空采血管采集静脉血并混匀，松开止血带，棉签压迫伤口（或摆放纱垫并扎绷带）；4、移除穿刺针，并将穿刺针放入利器盒内，嘱咐患者压迫穿刺点，标记试管并注明采集时间，立即送至相应实验室检测。

⑷ 实验诊断学的标本的采集和处理

1、血液标本的采集和处理
(1)采血部位
①毛细血管采血：成人在指端，特别是无名指，婴儿可用拇趾或足跟。
②静脉采血：多在肘部，腕部或手背静脉，婴幼儿可在颈外静脉采血。
③动脉采血：常用于血气分析时，多在股动脉穿刺采血，也有用肱动脉或桡动脉
(2)采血时间：
①空腹采血：一般在晨起早餐前采血，常用于临床生化检查。
②特定时间采血：如激素、葡萄糖等的测定
③急诊采血：不受时间限制
(3)标本采集后的处理
①抗凝剂：临床常用的抗凝剂有：草酸钠，草酸钾、肝素、乙二氨四乙酸二钠(EDTA-Na
2
)
②血液标本采集后应尽快送检和检测，微生物检验的血标本采集后应立即注入血培养皿中送检并防止标本的污染
2、骨髓标本的采集和处理
(详见有关章节)
3、排泄物、体液标本的采集和处理(详见有关章节)

⑸ 标本采集的原则有哪些

临床上，采集标本时应遵循以下基本原则：（1)遵 照医嘱采集标本（采集各种标本均应按医嘱执行）；（2)做好 核对及解释工作；⑶正确采集标本，保证标本质量；⑷及时送检。

⑹ 临床血液标本送检原则包括

一、检验标本的保存和运送检验标本保存和运送是检验质量保证的重要环节之一。由于
采集的标本受各种因素的影响，可能使检验结果受到或大或小的
误差，因此必须正确掌握标本保存和运送。

(1)标本采样后须立即送检的常规项目有：血沉、血气分析、
血氨、酸性磷酸酶、乳酸以及各种细菌培养，特别是厌氧菌培养。

(2)标本采样后0.5h内送检的常规项目有：尿常规、血糖、电解质、血液细胞学、体液细胞学、涂片找细菌、霉菌等。

(3)标本采样后0.5～2h内送检的常规项目有：
粪便标本、痰标本、各种蛋白质类、色素类、激素类、脂类、酶类、抗原、抗体测定等
二、检验标本的送检和处理检验标本采集后放置时间过长，将导致生化成份发生改变。
如：
尿液留取后超2送检被认为不新鲜标本，其化学成份将分解，使结果成假阴性；血气分析标本久置后，PH和PO2下降，PCO2升高，必须立即送检，否则将严重影响结果的准确性；一般血液标本送检延时时，其红细胞代谢产生的内源性产物将释放入血，使钾、转氨酶显著升高，血糖降低。

因此，对标本离体后的保存有特殊要求。如：温度、湿度、光照、时间等，负责标本采集和运送的人员应熟练掌握相关知识，在运送工具的选择、标本的保存、环境等方面严格按规定执行，检验标本采集后应尽快送检，确保在规定的时间内送到检验科，并注意标本的隔离、封装，特别是对怀疑有高生物危险的标本，应严密包装，防止传染。检验标本经过由培训上岗的送检人员运送，所有标本加盖密封，避免倒出、污染，外套塑料袋，扎好口；所有标本竖着运送，不能随意颠倒、震荡；各种检验申请单与标本同时送检，不能分开。血液标本的运送必须保证运送过程中的安全，防止溢出，溢出后应立即对环境进行消毒处理，对有传染性的标本以确保不污染环境和保护人员的安全为原则。

具体要求：

1、标本运送要注意防止标本外溢、蒸发和污染，用有盖容器
采集、运送检验标本。

2、严格控制温度，如遗传系列检测标本需要置于18~25℃环境运输，不可冷藏和冰冻。

3、运输过程中对于所有感染性物质（包括血液检验质量）的溢出物，可采用以下清除程序：
（1）戴好手套。

（2）用布或纸巾覆盖并吸收溢出物。

（3）向布或纸巾上倾倒消毒剂，包括其溢出物周围区（通常可用含氯消毒剂）。

（4）使用消毒剂时，从溢出区域的外围开始，朝向中心进行处理。

（5）约30分钟后，清除这些物质。如果现场有碎玻璃或其他锐器，则用撮箕或硬质纸板收集并将其存放于防刺穿容器内以待处理。

（6）对溢出区进行清洁和消毒（如有必要，重复第2～5步）。

（7）将受污染的材料置于防漏、防刺穿的废弃物处理容器内。

（8）经成功的消毒后，向相关科室报告溢出事件，并说明已经
完成现场清除污染等处置工作。

⑺ 标本采集的五个原则是什么

1、采集标本应注意无菌操作，避免细菌污染。

2、根据患者病期不同，采集不同部位标本。

3、采集标本应在使用抗菌素之前，否则应在分离培养时加入药物拮抗剂;在采集时不可用消毒剂，必要时可用生理盐水冲洗，擦干后取材。

4、尽可能采集病变明显部位的材料。

5、标本必须新鲜，采集后及早送检。

(7)临床采集标本知识培训扩展阅读

主要分类——

1、整体标本：

通常用来识别植物，鉴定学名，鉴别中草药。对某一地区进行植被调查也是使用这种标本。例如调查某个学校、山头的植物资源。

2、解剖标本：

制作目的在于观察、研究植物某一器官的内部组织结构。如解剖洋葱的鳞茎，以观察基盘、幼芽、鳞叶、须根等结构。

3、比较标本：

比较标本主要是比较不同植物的某一器官的异同。例如比较双子叶植物和单子叶植物种子形态就要采集油菜、大豆、黄瓜、番茄等成熟的果实，除去果皮，将种子晾干，还要采集小麦、水稻、玉米的果实晾干进行比较。